当前我国猪瘟防制中存在的问题和对策(3)

疫苗的运输、保存、使用不当，亦易影响免疫效果。猪瘟冻干苗应在低温条件下运输和保存，稀释后应立即使用，不能存放过久。有人曾在夏季一个市场防疫注苗点进行试验，早晨刚稀释的疫苗经检验完全符合出厂标准，即每头份含150RID，但到傍晚，自注苗点抽检最后剩下1瓶稀释的疫苗检测，每1头份只有15个兔体反应量，在Id中效价已损失90％。因此，稀释后的疫苗如不能立即用完，应放在冰瓶内低温保存。此外，疫苗注射操作过程中的失误，如使用失真空的疫苗或过有效期的疫苗；消毒不严，造成潜伏期病毒的传播等都会影响疫苗的免疫效果。

1．4免疫程序问题

我国各地对HC的防制工作一般都很重视，但有些地区仍时有HC暴发流行，免疫失败的现象也常有发生。其原因除免疫剂量不够，免疫覆盖率偏低以外，免疫程序不尽合理也是一个重要因素。为了寻求更加科学、合理、有效的猪瘟免疫程序，各地进行了大量试验研究。

免疫程序的关键是排除母源抗体干扰，确定合适的首免日龄。门常平等（1982）报道母猪在配种前免疫接种的，所产仔猪血中母源抗体的中和效价，3～5日龄时约为1:64～128母源抗体的半衰期约10d，仔猪2O日龄前可得到母源抗体的保护。25日龄后保护力下降，至40日龄已完全丧失对强毒的抵抗力，45日龄前后母源抗体效价已降至l：4～8.猪瘟疫苗的仔猪首免日期，最好选定在仔猪持有的母源抗体不会影响疫苗的免疫效果而又能防御病毒感染的期间，即母源抗体为1：8～64时。因此提出25日龄和 65日龄2次免疫的建议，此种免疫程序目前已为多数猪场采用［1］。如在母源抗体效价尚高时接种疫苗，即会被母源抗体中和掉部分弱毒，阻碍疫苗弱毒的复制，仔猪就不能产生坚强的主动免疫力。

1.5其他免疫抑制疾病的影响

一些其他常见疾病如猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）在猪群中的存在，会使猪体免疫力下降，从而影响HC的免疫保护力。PRRS所引起的最显著病理变化是严重损伤肺泡巨噬细胞，造成其大量破坏，并伴有循环淋巴细胞及粘膜纤毛清除系统的破坏，从而抑制免疫力，使猪对各种继发感染易感。PRRS感染产生的免疫抑制，也可以恶化慢性传染性疾病，并使猪对其他疾病如猪瘟等各种疫苗的免疫应答下降，造成免疫失败。

2有效控制和消灭HC的对策

2．1加强HC诊断和免疫监测

典型HC可主要根据临床症状和病理变化作出诊断，实验室诊断为辅助手段。非典型HC由于症状不明显和缺乏特异性特征，通常需取决于实验室诊断。

实验室诊断目前常用的方法有：①冰冻组织切片（或触片）的直接荧光抗体（FA）试验。许多国家和地区已将该法作为执行消灭HC规划的法定诊断方法，此法简便、快速。可靠。作为FA试验的样品应采自病死猪的扁桃体、脾、肾或回肠末端。②将病猪扁桃体和脾制成20g／L的混合匀浆后接种PK-15细胞， 24～72 h以后用FA试验或酶标抗体检查证实培养物中的病毒（HCV无CPE）。此种病毒分离方法比FA更为敏感。③经典的HC诊断方法是接种易感猪和免疫猪，或用兔体交叉免疫试验（可区别免毒和强毒）。④间接法酶联免疫吸附试验，可作为HCV感染猪血清抗体的检测与分析。⑤为区分HCV和BVDV需借助单克隆抗体技术和核酸探针技术。

为了弄清群体的免疫水平和疫苗免疫效果，必须加强HC免疫监测。杜念兴等（1998）［5］建立的PPA-EISA，曾对抗体不同水平的猪进行攻毒保护试验。结果ODde值在0．3以上100％保护；≥0．17至≤0．3之间者，保护率在75％左右。据此制定了群体总保护率的估算公式：

免疫良好的免疫群体保护率多在90%以上，总保护率小于50％者为免疫无效或HC不稳定地区，需加强免疫或采取措施消除不稳定因素。

总之，做好免疫监测是减少我国HC发生的重要手段。应用免疫检测可随时掌握猪群的免疫状态，制定适合于该猪场合理的免疫程序，并随时淘汰免疫耐受猪（疫苗接种后不产生或仅产生低水平抗体的猪），保持猪群的整体免疫。此外，结合HCV抗原检测，坚决淘汰隐性感染或潜伏感染的种公猪和母猪，消除引起仔猪先天感染和免疫耐受的传染源。